1976年西班牙馬普生物化學物理研究所Neher和在烏龜肌細胞上用雙電極鉗制膜電位的同時，記錄到ACh的單通道離子電壓，因而形成了膜片鉗技術。1980年等在記錄電極內施加5-的負壓吸引，得到10-100GΩ的高阻封接（Giga-seal），顯著增加了記錄時的噪音實現了單根電極既鉗制膜片電位又記錄單通道電壓的突破。1981年和Neher等對該技術進行了改進，引進了膜片游離技術和全細胞記錄技術，因而使該技術更趨健全，具有1pA的電壓靈敏度、1μm的空間幀率和10μs的時間幀率。1983年10月，《-》一書問世，奠定了膜片鉗技術的里程碑。和Neher也因其杰出的工作和突出貢獻，入選1991年諾貝爾醫學和生理學獎。膜濁度測定的根據是熱學中的歐姆定理。臺灣全細胞膜片鉗研究
資料剖析：通常熱學性質∶通過I/V關系估算得到單通道濁度，觀察通道有無檢波。通過離子選擇性、翻轉電位或其它通道的條件初步確定通道類型。通道動力學剖析∶開放時間、開放機率、關閉時間、通道的時間依賴性失活、開放與關掉類型（簇狀猝發，Burst）樣開放與閃爍樣短暫關掉（），物理門控性通道的開、關速度常數等數據。毒理學研究∶研究的抗生素，阻斷劑、激動劑或其它調制誘因對通道活動的影響情況。綜合剖析得出結淪。臺灣全細胞膜片鉗研究這是一種以記錄通過離子通道的離子電壓來反映細胞膜單一的或多個的離子通道分子活動的技術。
膜片鉗技術∶從一小片（約幾平方微米）膜獲取電子學方面信息的技術，即保持跨膜電流恒定——電壓鉗位，進而檢測通過膜離子電壓大小的技術。通過研究離子通道的離子流細胞膜片細胞膜片，進而了解離子運輸、信號傳遞等信息。基本原理：借助負反饋電子線路，將微電極前列所吸附的一個至幾個平方微米的細胞膜的電位固定在一定水平上，對通過通道的微小離子電壓作動態或靜態觀察，進而研究其功能。研究離子通道的一種電生理技術，是施加負壓將玻璃微電極的前列（開口半徑約1μm）與細胞膜緊密接觸，產生高阻抗封接，可以精確記錄離子通道微小電壓。能制備成細胞貼附、內面朝外和外邊朝內三種單通道記錄方法，以及另一種記錄多通道的全細胞形式。膜片鉗技術實現了小片膜的孤立和高阻封接的產生，因為高阻封接使背景噪音水平**增加，相對地增寬了記錄頻帶范圍，增強了幀率。另外，它還具有良好的機械穩定性和物理絕緣性。而小片膜的孤立使對單個離子通道進行研究成為可能。
細胞是植物和人體的基本單元，細胞與細胞內的通訊是借助其膜上的離子通道進行的，離子和離子通道是細胞激動的基礎，借以形成生物聯通號的基礎，生物聯通號一般用熱學或電子學方式進行檢測。由此產生了一門細胞學科--電生理學。膜片鉗技術已成為研究離子通道的黃金標準。電流門控性離子通道：膜上通道蛋白的帶點集團在膜電位改變時，在電場的作用下，重新分布造成通道的關掉，同時有電荷聯通，稱為門控電壓。官能團門控離子通道：神經遞質（如甲基膽堿）、ji素等與通道蛋白上的特定位點結合，導致蛋白構像的改變，造成通道的打開。不同的全手動膜片鉗技術所采用的原理也不完全相同。
這一設計模式雖然幾六年都沒有改變過，作為一個有著近20年膜片鉗經驗的科研工作者，記得自己步入實驗室次看見的放大器就差不多是這樣，也不認為都會有哪些變化。直至筆者在19年訪問法國的一個同樣做電生理的實驗室的時侯，發覺了這樣一款奇特的放大器，讓筆者眼前一亮，這款放大器從后置放大器下來的線居然就直接聯接在了筆記本上，當筆者問她們放大器和數模呢？她們說，你看見的就是全部了，所以的部件都包含在了這個后置放大器中。膜片鉗技術的完善，對生物學科學非常是神經科學是一資有重大意義的改革。臺灣全細胞膜片鉗研究
全細胞膜片鉗記錄是應用較早，也是普遍的鉗位技術。臺灣全細胞膜片鉗研究
鈣成像技術被廣泛應用于實時檢測神經元、心肌以及多種細胞胞內鈣離子的變化，進而監測神經元、心肌的活動情況。這種技術是人們觀測神經以及多種細胞活動為直接的手段，現已發展為生命科學研究的熱點，也是國家自然科學基金等鼓勵申報的重要領域。光遺傳學調控技術是近幾年正在迅速發展的一項整合了光學、基因操作技術、電生理等多學科交叉的生物技術。刊物將此技術評為""[19]；日本麻省理工大學科技評析（，2010）在其總結性文章""手指出：光遺傳學調控技術現早已迅速成為生命科學，非常是神經和腎臟研究領域中熱門的研究方向之一。目前這一技術正在被全球幾百家從事腎臟學、神經科學和神經工程研究的實驗室使用，幫助科學家們深入理解腦部的功能，從而為深刻認識神經、精神疾患、心血管疾患的發病機理并研制針對癌癥干預和的新技術。臺灣全細胞膜片鉗研究
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