資料剖析：通常熱學性質∶通過I/V關系估算得到單通道濁度，觀察通道有無檢波。通過離子選擇性、翻轉電位或其它通道的條件初步確定通道類型。通道動力學剖析∶開放時間、開放機率、關閉時間、通道的時間依賴性失活、開放與關掉類型（簇狀猝發，Burst）樣開放與閃爍樣短暫關掉（），物理門控性通道的開、關速度常數等數據。毒理學研究∶研究的抗生素，阻斷劑、激動劑或其它調制誘因對通道活動的影響情況。綜合剖析得出結淪。在細胞膜的熱學模型中，膜電容和膜濁度構成了一個并聯回路。日本全細胞膜片鉗研究
過去覺得，膜片鉗只能在培養細胞或酶解的細胞上進行，這樣得到的細胞膜表面比較光滑，才才能產生高阻封接，但缺點是組織的正常三維結構被破壞，但是對神經中樞內突觸特有的傳遞機能的研究未能展開。于是，一些學者構建了組織切片膜片鉗技術（Slicepatch），能夠在喂奶植物腦片制備上做全細胞記錄。1992年，在腦片膜片鉗技術上，日本實驗室***報導在在體貓的視皮層用膜片鉗全細胞記錄研究了視剌激誘發的激動性和***性突觸后電位互相影響及節律性膜電位的變化規律。1993年，加拿大的Dodt和合作，借助紅外電視顯微鏡監視，致使膜片鉗記錄不但能否在神經元胞體及其樹突上進行，并且可同時在這兩個不同的部位作膜片鉗記錄。全手動膜片鉗電壓鉗制膜片鉗技術實現了小片膜的孤立和高阻封接的產生，增寬了記錄頻帶范圍，增強了幀率。
1937年，和在烏賊巨大神經軸突細胞內實現細胞內電記錄，獲1963年Nobel獎1946年，凌寧和創造拉制出前列半徑大于1μm的玻璃微電極，并記錄了骨骼肌的電活動。玻璃微電極的應用使的電生理研究進行了重命性的變化。（電流鉗技術）由Cole和發明，并很快由和建立，真正開始了定量研究，完善了H一H模型（膜離子學說）細胞膜片，是近代激動學說的基石。1948年，Katz借助細胞內微電極技術記錄到了終板電位;1969年，又否認N—M接觸后的Ach以"量子式"釋放，獲1976年Nobel獎。1976年，美國的Neher和發明（膜片鉗）。并在蛙橫紋肌終板部位記錄到甲基膽堿造成的通道電壓。
膜片鉗技術的成立代替了電流鉗技術，是細胞電生理研究的一個飛越，致使離子通道的研究，從宏觀深入到微觀，使昔日的“肉湯生理學(broth)”與“閃電生理學()”在分子水平上結合上去，使人們對膜通道的認識耳目一新。當前，生理學、生物化學學、生物物理、分子生物學和毒理學等多種學科正在把膜片鉗技術和膜通道蛋白重組技術、同位素示蹤技術和波譜技術等非電生理技術結合上去，協同對離子通道進行較全的研究。不少實驗室早已將基因工程與膜片鉗技術結合上去，把通道蛋白有目的地重組于人工膜中進行研究。構想將合成的通道蛋白分子接種入機體以替換有缺陷和異常的通道的功能而達到的目的。在細胞膜的電激動過程中，脂類層膜電容的反應是被動的，其電壓電流曲線是線性的。
膜片鉗技術實現了小片膜的孤立和高阻封接的產生，因為高阻封接使背景噪音水平增加，相對地增寬了記錄頻帶范圍，增強了幀率。另外，它還具有良好的機械穩定性和物理絕緣性。而小片膜的孤立使對單個離子通道進行研究成為可能。單通道電壓1.典型的單通道電壓呈一種振幅相同而持續時間不等的脈沖樣變化。他有兩個濁度水平，即O和1，分別對應通道的關掉和開效狀態。2.有的方形脈沖簇狀領取時，通道電壓不在同一水平，可以顯著觀察到不同數量離子通道所產生的電壓臺階，因而可推測出被測膜片的通道數量。3.有的通道可記錄到圓滑型和方波形兩種方式。4.有些通道開放活動是持續開放，中間被閃爍樣的關掉所中斷，產生burst開放。有些通道開放活動是簇狀開放與短期平淡交替出現，形成簇狀領取串（）因為膜片鉗檢查的是PA級的微電壓訊號，因而須要特殊的放大器及模數轉換器。日本全手動膜片鉗專題
了解離子通道的功能以及結構的關系對于從分子水平深入剖析個別癌癥舉措等均具有非常重要的理論和實際意義。日本全細胞膜片鉗研究
高阻封接技術還顯著增加了電壓記錄的背景噪音，因而戲曲性地提升了時間、空間及電壓幀率，如時間碼率可達10μs、空間碼率可達1平方微米及電壓碼率可達10-12A。影響電壓記錄碼率的背景噪音不僅來自于膜片鉗放大器本身外，主要還是訊號源的熱噪音。訊號源仿佛一個簡單的內阻細胞膜片，其熱噪音為σn=4Kt△f/R式中σn為電壓的均殘差根，K為波爾茲曼常數，t為體溫，△f為檢測帶寬，R為內阻值。可見，要得到低噪音的電壓記錄，訊號源的電阻必需特別高。如在1kHz帶寬，10%精度的條件下，記錄1pA的電壓，訊號源電阻應為2GΩ以上。電流鉗技術只能檢測電阻一般達100kΩ～50MΩ的大細胞的電壓，因而不能用常規的技術和制備達到所要求的幀率。日本全細胞膜片鉗研究
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